黄酮生产力优化的绿色和红色形式Perilla frutescens.通过工厂环境控制技术

抽象的

Perilla frutescens.(唇形科)是亚洲的主食。它是一种丰富的黄酮类化合物的来源，对人体健康和健身有生物活性的好处。目前植物性消费的流行是由生物活性营养的健康益处驱动的，而在植物原料中发现的生物活性剂的浓度是评价食品质量的一个重要因素。探讨提高黄酮类化合物产量的可行性悬崖植物通过环境处理，厂工厂技术应用于悬崖植物栽培。芹菜素(AG)和木犀草素(LT)是黄酮类化合物中最具抗癌作用的两种悬崖，许多蔬菜和水果中也含有这些物质。对不同光强(100、200和300)条件下9种环境处理下的植物进行了AG和LT的定量分析μ.mol·m⁻²·年代⁻¹）与三种营养液浓度（1.0,2.0和3.0ds·m相结合⁻¹）用于培养。绿色和红色的Ag内容悬崖在相同的光强度下，通过高营养溶液水平提高植物。在绿色悬崖，浓度最高（8.50 μ.G·G.⁻¹）在治疗最高水平的营养溶液（3.0ds·m⁻¹）和200 μ.mol·m⁻²·年代⁻¹光强度，而红色悬崖，最高浓度的AG（6.38 μ.G·G.⁻¹)是由这两种治疗形式的最高水平实现的(300μ.mol·m⁻²·年代⁻¹和3.0 d·m⁻¹）.最低和最高水平之间的每株植物的AG含量增加6.4倍，绿色和红色折叠8.6倍悬崖,分别。绿色和红色两种形态之间的LT浓度行为不同悬崖．红色的LT浓度悬崖在营养缺陷下增强了（1.0 ds·m⁻¹）受光强度的影响。在Ag的累积中观察到不同的反应，红色和绿色悬崖并从苯丙素和花青素表达的生物合成途径的角度对这一现象进行了讨论。通过优化处理方式，黄酮类化合物(AG和LT)的总产率均有所提高，其最佳总产率为33.9 mg·株⁻¹在绿色紫苏属；10.0 mg·植物⁻¹用红色悬崖和4.9倍和5.4倍的增加，以绿色和红色记录悬崖,分别。本研究表明，黄酮生物合成和积累悬崖植物可以通过环境控制技术进行优化，这种方法可以适用于生物活性营养的叶状蔬菜，以产生高黄酮含量的稳定工业供应。

1.介绍

植物次生代谢产物是食物营养的重要组成部分，其含量可作为食物品质的重要指标。SMs包括萜类、苯丙素、类黄酮和生物碱，它们是决定谷物、蔬菜和水果的味道、颜色和味道的基本食物成分[1］．此外，由于抗氧化剂等化合物对人体健康有益的生物活性已为人所知，许多短信被认为对人体和心灵都有药用效果[2，3.］．

近年来，食用富含生物活性SMs的食物在世界范围内越来越受欢迎。然而，由于缺乏一种有效的方法来控制植物栽培中SM的含量，保持稳定的植物原料供应，以生产高营养价值的食品仍然存在问题。SMs的生产和积累对环境条件都很敏感[4，5］．一般来说，植物在压力较小的环境中生长迅速，产生更好的生物量。另一方面，生物和非生物的应激因素都诱导SMs的形成，如酚类化合物[6］．与此同时，通过详细描述次生代谢的稳定表达和生物活性SMs的浓度，已经进行了一些尝试来评估在不同环境下生长的植物的质量，这些生物活性SMs有望作为一种额外的健康促进成分被包括在植物性食品中[7］．

植物工厂是一种粮食生产系统，可以全年供应稳定的植物原料，不受气候变化的影响[8]已被证明是有效的药用植物生产，因为环境条件可以完全控制。由于细菌和昆虫控制量高，这些系统中生产的植物不需要杀虫剂。因此，当可以针对特定作物确定最佳环境条件时，植物厂可以产生具有所需质量水平的安全食品。调节光，温度和水等环境因素对植物代谢和合成途径产生重大影响，增强了SM含量。众所周知，植物中的SMS浓度与其生长条件不同。为植物提供高压力环境可能会促进SMS的积累;然而，较高的应力水平通常同时导致产量较低。在植物厂的实际生产中，在生物质产量和短信集中保持平衡以使经济效益最大化，这是非常重要的。因此，量化来自单个环境因子的最佳应力水平或从多种环境因素的相互作用变得至关重要，对商业设备工厂的实际生产药用生产。与户外条件的植物生产不同，厂家厂可以精确调整其环境因素，如光强度，光谱，营养液水平，温度，空气流速等。没有限制位置。 If the treatments and their effects on SMs synthesis are quantified, this technique can be directly applied into commercial plant factories all over the world not only theoretically but also practically.

Perilla frutescens.(唇形科)在亚洲被广泛用作烹饪药草，尤其是在日本。颜色和味道悬崖是传统日本料理的熟悉部分。在日本，提取物悬崖用来给腌制蔬菜和日本李子增加颜色和味道。在日本、韩国和印度，人们普遍使用悬崖在准备生的鱼和贝类时，用树叶来减少气味，并把它加到烤红肉中来增加味道[9］．作为一种药材，用于生药悬崖用于临床应用，已列于日本药典[10]， 大韩民国 [11]，并在中华人民共和国境内[12］．

Apigenin（Ag）和叶黄素（LT）是存在的主要类黄酮悬崖并且也包含在许多蔬菜和水果中：芹菜，欧芹和洋葱为AG;对于lt，红辣椒，莴苣，浆果和洋葱。Ag，和LT被称为抗氧化剂，抗炎和抗毒性药剂，因此，由于它们作为化学预防剂的潜力，它们引起了研究人员的注意[1，13- - - - - -15］．因此，Ag和LT是来自植物衍生膳食药物的许多药物或营养保健品的候选化合物，用于开发新疗法[1，13- - - - - -15］．然而，对于医疗用途，必须指出，许多类黄酮包括Ag和LT具有密封效应，具有使它们有毒的潜力，从而使剂量调整是实现安全性和功效的必要性[15］．因此，植物的食物中Ag和LT LT LT是重要的，必须通过满足能够以优质提供这些原材料提供这些原材料的技术挑战来控制。

在先前的研究中，我们发现甘氨酸（RA）是LamiCeae家族草药中的主要苯基丙醇化合物，高度增加P. Frutescens.通过营养有限的病症产生的摄取胁迫在植物工厂中结合高光强度（Li），同时保持恒定浓度的悬浮液（PA），在悬崖精油(16］．鉴于三萜类化合物和苯基丙醇相对于生物合成途径和积累之间存在的差异，PA和RA可能没有同步增加。然而，由于黄酮类化合物的生物合成伴有苯丙醇丙烷的生物合成途径，因此仍然尚不清楚黄酮类化合物如何对影响苯丙二醇的产生的环境反应。应该澄清这是为了根据浓度的食品营养来源来确定原料植物材料的质量控制。因此，在本研究中，我们研究了一种量化的黄酮类化合物的定量生产悬崖植物通过逐渐引入培养中常见的应力，并与Ag和LT的定量表达进行了比较。在厂家工厂，具有人工照明，悬崖采用水培法，通过光照强度和养分浓度的组合，培养了9种不同水平的环境处理。采用液相色谱-质谱联用技术(LC-MS)对黄酮类化合物AG和LT的含量进行定量分析悬崖植物生长在不同的生长条件下。

2。材料和方法

2.1。紫苏属材料和生长条件

绿色的悬崖（P. Frutescens.var。Crispa f。viridis.Makino，Takii种子有限公司，京都，日本）和红色悬崖（P. Frutescens.（L.）布里顿。var。acuta.Kudo.F。克里帕Makino，0657-79ts，国家生物医学创新研究所，大阪，日本）种子播种在摇滚浴块（125厘米^3.）在栽培室。李被设定为150 μ.mol·m⁻²·年代⁻¹（单位μ.mol·m⁻²·年代⁻¹represents photosynthetic photon flux density on the surface of cultivation containers) with a photoperiod of 16 h per day provided by cool white fluorescent lamps (FHF32 EX-N-H, Panasonic, Co., Ltd., Japan), and the plants were irrigated with a nutrient solution (Otsuka hydroponic composition, OAT Agrio Co., Ltd., Tokyo, Japan) (Otsuka formula as described by Lu et al. [16]）。将营养液的电导率（EC）和pH调节至1.2ds·m⁻¹和6.0分别。空气温度，相对湿度和CO₂浓度设置为25/20°C(亮/暗时段)，60-80%，400μ.mol·mol.⁻¹,分别。

２.２.治疗

播种后三周，红色悬崖和绿色悬崖将幼苗移植到步入式植物厂（2.9米×2.0m×2.3米的LWH）中，并进行三个LI水平（100,200和300 μ.mol·m⁻²·年代⁻¹）通过冷白荧光灯和三个EC水平提供每天16小时的光周期（1.0,2.0和3.0 ds·m⁻¹）五个星期。在将植物放置之前，使用光线计（Li-250a; Li-Cor Inc.，Lincoln，Ne，USA）在岩溶机构的表面测量锂。该实验设置在一个3×3完整因子中，用Li作为主图和EC水平作为子图，每种治疗都包含18个植物。三种营养液罐（EC为1.0,2.0和3.0 DS·m⁻¹对于栽培系统旁边制备了每种）。使用来自每个罐的新鲜营养溶液从底部每2天灌溉植物。在每个摇滚伞立方体饱和后丢弃溢出的营养溶液。空气温度，相对湿度和CO₂浓度设置为23/20°C(亮/暗时段)、60-80%和1000μ.mol·mol.⁻¹,分别。

2.3。萃取

提取悬崖根据日本药典[10]和前一篇文章中描述的方法[16］．将叶子取样并在30℃下干燥2周。干燥悬崖树叶被磨成粉末，然后用筛子过滤。将10.00-10.50 mg样品准确称量并转移到1.5 mL试管中。加入甲醇(1 mL)，在2000 rpm和15°C下使用Eppendorf温度计(Hamburg, Germany)混合10分钟，离心5分钟。在残渣中加入甲醇(1 mL × 2)，以相同的方式提取两次。将提取液(约3ml)合并，转移到5ml容量瓶中，用甲醇稀释至5ml总体积。溶液经过安捷伦0.2过滤μ.M尼龙注射器过滤器（Agilent Technologies Inc.，Palo Alto，CA，USA）为LC-MS制备样品。

2.4。AG的内容和LT

根据Nishimura等人描述的方法进行Ag和LT的LC-MS分析。［17经过一些修改。一个日本岛津公司LC-20A突出系统(高效液相色谱)与SIL-20AC autosampler质谱(MS)和lcms - 2020配备了一个电喷雾电离(ESI)源操作在负模式被用于识别和量化AG)和LT的色谱数据处理使用LabSolutions软件(日本岛津公司,京都,日本)。HPLC条件为XBridge BEH C18色谱柱(3.5μ.M，2.1×150毫米，水域，马，美国）;温度40°C;流速，0.2毫升/分钟;运行时间，15分钟;流动相，30％乙腈/ 0.1％甲酸;和注射体积，1 μ.L.洗脱液通过电喷雾源。在负离子模式中使用3.5kV的毛细管电压。使用氮气用作干燥气体，流速为15升·分钟⁻¹流速为1.5 L·min的雾化气体⁻¹．将脱溶解管线温度设定在250℃。离子阱以全扫描模式运行m / z.50至1000和选择离子监测（SIM）模式m / z.269用于分子离子[M-H]⁻AG)和m / z.285用于分子离子[M-H]⁻将AG和LT的标准品溶于少量四氢呋喃中，用甲醇稀释制得标准溶液，用于鉴定和定量。每叶干重的AG和LT含量(以下简称AG和LT浓度)用样品中AG和LT含量除以样品重量来计算。

2.5。化学品

从Fujifilm Wako Pure Chemical Corporation（大阪，日本）购买甲醇（LC-MS等级）和水（LC-MS等级）。AG和LT标准是从东京化工有限公司（日本东京）获得的。乙腈（HPLC级）是从Sigma-Aldrich日本（日本东京）获得的。甲酸购自Kanto Chemical Co.，Inc。（日本东京）。

2.6。统计分析

每个样品的所有测量重复三次。从每次处理中取样5到6个工厂，以确定浓度。采用SPSS统计软件(IBM SPSS Statistics, Version 25.0)通过Tukey’s检验对处理数据的均数进行方差分析进行比较。纽约阿蒙克:IBM公司)。一个值<0.05被认为是显著的。

3。结果与讨论

３.１.绿色和红色中AG和LT的浓度紫苏属

Ag的浓度和绿色悬崖如图所示1(一)和1 (b)，为单位叶干重的含量。EC为1.0 dS·m时，AG浓度降低⁻¹使用相同的LI，随着100和200的LIS，EC的增加随着EC的增加而增加 μ.mol·m⁻²·年代⁻¹(图1(一)）.AG的浓度是最低的（2.95 μ.G·G.⁻¹）在1.0 ds·m的EC下⁻¹和200的李 μ.mol·m⁻²·年代⁻¹，但它增加到最高水平（8.50 μ.G·G.⁻¹）在3.0 ds·m的EC下浓度（增加2.9倍）⁻¹和200的李 μ.mol·m⁻²·年代⁻¹．LI对同一EC下的AG浓度几乎没有影响，除了200和300的LIS之间的比较 μ.mol·m⁻²·年代⁻¹在3.0 ds·m的EC下⁻¹．结果显示，经处理后的LT浓度没有显著差异，不受LI和EC的影响(图)1 (b)）.

AG和LT的浓度用红色表示悬崖如图所示1 (c)和1 (d)，为单位叶干重的含量。在相同浓度下，AG浓度随EC浓度的降低而降低，而EC浓度不变时，LI对AG浓度的影响不大。最低值(3.43μ.G·G.⁻¹）在最低水平的EC和Li，最高值（6.38）下获得 μ.G·G.⁻¹)，在EC和LI水平最高(增加1.9倍)的情况下。LT浓度在处理后差异不大，除100和200处理外μ.mol·m⁻²·年代⁻¹在1.0 ds·m的EC下⁻¹．LT浓度随EC的降低而增加，通过EC的最低水平显着增加（1.0ds·m⁻¹）李200 μ.mol·m⁻²·年代⁻¹．LT的浓度是最低的（5.92 μ.G·G.⁻¹)， EC值为3.0 dS·m⁻¹和200的李 μ.mol·m⁻²·年代⁻¹，但它增加到最高水平（11.9 μ.G·G.⁻¹）在1.0 ds·m的EC下浓度（增加2.0倍）⁻¹和200的李 μ.mol·m⁻²·年代⁻¹．

3.2。Ag和绿色和红色的含量紫苏属

绿色的AG和LT LT的内容悬崖如图所示2(一个)和2（b）,分别。最高的EC（3.0 ds·m⁻¹)的单株AG和LT含量较高。在EC为1.0 dS·m时，单株AG和LT含量最低⁻¹和200的李 μ.mol·m⁻²·年代⁻¹但在EC为1.0 dS·m时，AG和LT的含量分别增加了6.4倍和3.7倍，达到最高水平⁻¹和200的李 μ.mol·m⁻²·年代⁻¹．单株的AG和LT含量与生长条件有关，而低EC和低LI则决定了AG和LT含量的高低。

单株AG和LT含量为红色悬崖如图所示2（c）和2（d）,分别。与绿色不同悬崖植物，李最高（300 μ.mol·m⁻²·年代⁻¹)，在相同EC条件下，红色植株的AG含量较高悬崖．在EC水平为2.0或3.0 dS·m时，单株AG含量较高⁻¹结合最高的李（300 μ.mol·m⁻²·年代⁻¹）.与上述治疗相比，所有其他治疗可获得明显降低每株植物的Ag含量较低。每株植物最低的AG含量（0.57 μ.g·植物⁻¹）在EC等级为1.0 ds·m⁻¹和300的李 μ.mol·m⁻²·年代⁻¹增加到最高（4.90 μ.g·植物⁻¹在3.0 ds·m的EC下，每株植物的AG含量（8.6倍增加）⁻¹和300的李 μ.mol·m⁻²·年代⁻¹．每株植物的含量趋于增加，益委的益额增加2.0和3.0 ds·m⁻¹．每株植物的含量最低（1.30 μ.g·植物⁻¹）在1.0 ds·m的EC下⁻¹和李100 μ.mol·m⁻²·年代⁻¹和最高值（5.19 μ.g·植物⁻¹在3.0 ds·m的EC下获得（4.0倍增加）⁻¹与300的李 μ.mol·m⁻²·年代⁻¹．

3.3。绿色和红色的黄酮类生产紫苏属

在不同植物物种中广泛研究了类黄酮生物合成[18］．Ag和LT在其化学结构中具有黄酮，以及作为关键生物催化剂的酶，以合成黄酮类化合物，黄酮，黄酮和花青素等黄酮类化合物的核心结构。RA是称为苯丙醇的两种C6-C3分子的酯，也已鉴定参与RA生物合成的酶柯伊斯布卢美L. [19］．最近，基因表达P. Frutescens.与类黄酮和苯丙素的生物合成途径有关的研究已在转录组分析中揭示[20.］．因此，基于上述知识，我们提出了与Ra，Ag相关的生物合成途径，其存在悬崖，如图所示3.．黄酮，Ag和LT的途径包括衍生自苯丙酮酸的一般生物合成l- 生成4-香豆酰基CoA的苯丙氨酸，这是黄酮生物合成的至关重要的前体[19］．基材4-香豆酰基-CoA是用于酯化的两种中的两种，在此期间它与4-羟基苯琥珀酸在Ra的生物合成中重要的步骤中反应。该事实表明，生产Ag，LT和Ra的分子需要使用与生物合成前体的4-香豆素-CoA分子相同，并且还表明需要激活苯基丙醇途径中涉及的酶。

我们的研究结果表明，EC水平对AG积累的影响和LT是完全不同的。对于3.0 ds·m的EC，Ag的浓度最高⁻¹的EC值最高，为1.0 dS·m⁻¹．此外，在1.0 ds·m的EC下，Ag浓度最低⁻¹，而在3.0 ds·m的EC下，LT的最低比率最低⁻¹．AG之间的这些反对反应可以反映其在柚皮素的共享中反映其竞争关系，其存在于AG和花青素的途径之间的联系（图3.）.在我们之前的报告中，RA的浓度是营养有限条件下的最高条件（EC为1.0 DS·m⁻¹）以最高的EC级（EC为3.0 DS·M）减少⁻¹)绿色和红色悬崖［16］．有趣的是，在红色中观察到LT和RA之间的类似响应悬崖，使LT集中在红色中得到增强悬崖在营养有限的压力下生长。

EC对LT积累的影响不同于绿色和红色悬崖．在绿色悬崖结果表明，不同环境下，单株LT含量变化趋势不同，但差异较大。根据生物量产量，高水平EC和LI均可促进LT的产量(图)1 (b)和2（b））.用红色悬崖EC为1.0 dS·m时，LT浓度增加⁻¹，这与生物量趋势相反(图)1 (d)和2（d））.这表明红色的新陈代谢悬崖当李达到200时，克服EC期间EC的负面影响 μ.mol·m⁻²·年代⁻¹，这导致LT的产量增加，以降低生物质产量，而是仅在该水平的Li处。LI值100和300 μ.mol·m⁻²·年代⁻¹， LT的产量与生物量产量有明显的相关性。

我们比较了AG并积累了绿色和红色悬崖（图4和5）.用红色悬崖， LT的积累量始终高于AG，而绿色则相反悬崖除3个处理外，AG均高于LT(图3)4）.LT分子在黄酮骨架的3 '位置上有一个羟基，在相应前体上引入3 ' -羟基的一种关键酶已被鉴定为黄酮3 ' -羟化酶(F3'H)(图)3.）.因为红色悬崖植物表现出编码F3'H的基因表达水平，与绿色植物中表达的水平相比，因为F3'H是拟南芥中的花青素合成中最重要的催化剂之一[20.]，LT的积累高于红色的ag佩里拉，推测是由于红色植物中F3'H在花青素生物合成中的转化活性高于绿色植物。为了阐明这一相互作用，我们尝试用LC-MS定量分析生物合成前体:柚皮素查尔酮、柚皮素、山奈酚、槲皮素和枇杷醇，但均未从提取物中检测到悬崖干叶子。这意味着这些分子在其相对途径的侦探水平中没有足够的积累。然后，我们虽然这些前体快速转化并用于Ag，LT和花青素的生物合成。

Ag的总浓度和绿色悬崖是200岁的最低点 μ.mol·m⁻²·年代⁻¹和1.0 ds·m的EC⁻¹，但在LI为200时，其浓度增加到最高水平(增加了2.2倍)μ.mol·m⁻²·年代⁻¹和3.0 ds·m的EC⁻¹(图5（a））.用红色悬崖，浓度在LI为200时最低μ.mol·m⁻²·年代⁻¹和3.0 ds·m的EC⁻¹在LI为300时增加到最高水平(增加1.4倍)μ.mol·m⁻²·年代⁻¹和1.0 ds·m的EC⁻¹(图5（c））.也就是说，与绿色植物相比，红色植物的总浓度范围更窄，说明红色植物能够承受更大的环境对黄酮积累的影响，从而使食品质量更加均匀。AG和LT的总收率为绿色悬崖是200的最低价 μ.mol·m⁻²·年代⁻¹和1.0 ds·m的EC⁻¹在200的李下增加至最高产量（增加4.9倍） μ.mol·m⁻²·年代⁻¹和3.0 ds·m的EC⁻¹(图5（b））.为红色悬崖当LI值为100时，AG和LT的总产量最低μ.mol·m⁻²·年代⁻¹和1.0 ds·m的EC⁻¹并在300的李下增加至最高产量（增加5.4倍） μ.mol·m⁻²·年代⁻¹和3.0 ds·m的EC⁻¹(图5（d））.由于绿色植物比红色植物获得了较大的生物质产量，因此它们具有Ag的最佳产率（33.9 mg·植物）⁻¹；李:200μ.mol·m⁻²·年代⁻¹；EC：3.0·DS·M⁻¹)，是红色植株(10.0 mg·株)的3倍⁻¹；李：300 μ.mol·m⁻²·年代⁻¹；EC：3.0 DS·m⁻¹)的最佳处理(图5（b）和5（d）），其中Ag的总浓度和红色植物中的总浓度几乎相同，14.6 μ.G·G.⁻¹和13.3. μ.G·G.⁻¹分别（图5（a）和5（c））.

4.结论

我们检测了以绿色和红色形式出现的生物活性黄酮类化合物悬崖植物。结果表明，在芹菜素和木犀草素的浓度和产量上，LI和EC对黄酮类化合物产量影响最大。因此，受这些因子调控的环境处理对黄酮的生物合成和积累有显著影响，提出利用这些因子作为绿色和红色栽培的有效方法悬崖植物。这些发现可能适用于在含有生物活性化合物的植物蔬菜组成的食品生产中的培养控制优化。

数据可用性

用于支持本研究结果的数据包括在文章中。

利益冲突

提交人声明有关本文的出版物没有利益冲突。

致谢

这项工作得到了日本食品化学研究基金会和千叶大学植物化学植物分子科学的支持。我们感谢Chayanit Tippayadarapanich女士(Kasetsart大学)在种植方面提供的技术援助。我们也要感谢Kazuki Saito博士和Mami Yamazaki博士(千叶大学)鼓励我们研究黄酮悬崖．

参考

1. S. C.Gupta，J.H.Kim，S.Prasad和B.B.Gaggarwal，通过营养法规调节炎性途径，“肿瘤细胞的存活率，增殖，侵袭，血管生成和转移调节”，“癌症和转移评论，卷。29，不。3，pp。405-434，2010。查看在：出版商的网站|谷歌学术
2. N. Sugihara, T. Arakawa, M. Ohnishi, K. Furuno，“黄酮类化合物对金属诱导的脂质过氧化氢依赖的脂质过氧化的抗氧化和促氧化作用α.亚麻酸。”自由基生物学和药物，卷。27，不。11-12，PP。1313-1323,1999。查看在：出版商的网站|谷歌学术
3. J. B. Harborne和C. A. Williams，“花青素和其他类黄酮(1998年1月至2000年12月)”，天然产品报告第18卷第2期3，页310-333,2001。查看在：出版商的网站|谷歌学术
4. R. A. Dixon和N. L. Paiva， "压力诱导的苯丙素代谢"植物细胞网络，卷。7，不。7，pp。1085-1097，1995。查看在：出版商的网站|谷歌学术
5. G. Sudha和G.A.Ravishankar，“各种信号化合物对植物代谢事件的参与和相互作用在防御反应期间，抗应力因子，次级代谢产物的形成及其分子方面”植物细胞，组织和器官文化，第71卷，第71期3，页181-212,2002。查看在：出版商的网站|谷歌学术
6. M. Tonelli, E. Pellegrini, F. D 'Angiolillo等人，“Melissa officinalis L茎培养中臭氧诱导的次生代谢物”，植物细胞、组织和器官培养，卷。120，不。2，pp。617-629,2014。查看在：出版商的网站|谷歌学术
7. E.Ogawa，S. Hikosaka和E. Goto，“营养溶液温度对红色主要生物活性化合物浓度的影响悬崖，“农业气象杂志，卷。74，没有。2，pp。71-78,2018。查看在：出版商的网站|谷歌学术
8. T. Kozai和G. NIU，“工厂工厂在城市地区的人工照明（PFAL）的作用”植物工厂:高效优质食品生产的室内垂直耕作系统，T.Kozai，G. Niu和M. Takagaki，EDS。，p。22，学术出版社，伦敦，英国，2016年。查看在：谷歌学术
9. H.-C。Yu”介绍,“紫苏属，属紫苏属，H.-c.Yu，K. Kosuna和M. Haga，Eds。，Harwood学术出版商，阿姆斯特丹，荷兰，1997年。查看在：谷歌学术
10. 日本厚生劳动省，日本药典，日本厚生劳动省，东京，日本，2017年第17版，http://www.mhlw.go.jp/file/06-seisakujouhou-11120000-iyakushushuhinkyoku/jp17_rev_1.pdf.．
11. 韩国食品药品安全部，韩国药典，朝鲜共和国食品和药物安全部，韩国共和国，大韩民国，第10版，2012年，http://www.mfds.go.kr/eng/eng/index.do?nMenuCode=128&page=1&mode=view&boardSeq=70483．
12. Zisugeng Zisuzi,威利主茎和威利fr，中国药典，北京，中国，2015。
13. D. Patel，S.Shukla和S.Gupta，“Apigenin和Cancer ChemPrevention：进步，潜力和承诺（审查），”国际肿瘤学杂志，卷。30，没有。1，pp。233-245,2007。查看在：出版商的网站|谷歌学术
14. F. Liu-Smith和F.L.Meyskens，“黑色素综合的黄酮类化合物的分子机制及对黑色素瘤的预防和治疗潜力”，“分子营养与食品研究，卷。60，否。6，pp。1264-1274,2016。查看在：出版商的网站|谷歌学术
15. V.C.George，G. Dellaire和H.P.V.V.Rupasinghe，“癌症化学普查的植物黄酮类化合物：在基因组稳定性中的作用”营养生物化学杂志， vol. 45, pp. 1-14, 2017。查看在：出版商的网站|谷歌学术
16. “植物次生代谢物的生长和积累悬崖受营养液的光合光子通量密度和电导率的影响，”植物科学的边疆，卷。8，p。708,2017。查看在：出版商的网站|谷歌学术
17. T. Nishimura，K. Ohyama，E. Goto和N. Inagaki，“悬浮牛，柠檬醛和花青素的浓度紫苏属在受控环境下受光质量影响的植物SCIENTIA HOTTIALURAE.，卷。122，没有。1，pp。134-137,2009。查看在：出版商的网站|谷歌学术
18. 非洲菊品种“埃斯特尔”及其含氰运动品种“象牙”的花青素生物合成，Planta.，卷。242，没有。3，pp。601-611,2015。查看在：出版商的网站|谷歌学术
19. M. Petersen和M. S. S. J. Simmonds，“Rosmarinic acid，”植物化学，卷。62，没有。2，pp。121-125,2003。查看在：出版商的网站|谷歌学术
20. A. Fukushima, M. Nakamura, H. Suzuki, K. Saito，和M. Yamazaki，“红色和绿色形式的高通量测序和从头组装Perilla frutescens.var. crispa转录组。”《公共科学图书馆•综合》，卷。10，没有。6，物品ID E0129154,2015。查看在：出版商的网站|谷歌学术

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