一个简单而有效的新的基于分子印迹聚合物的电化学传感器开发抗癌剂的选择性检测依托泊苷(ETP)。该传感器由electropolymerization通过循环伏安法(CV)吡咯在玻碳电极(GCE)上的ETP分子。ETP分子的提取嵌入到聚合物基体中是由氧化过度氢氧化钠中使用简历。各种重要参数影响印迹膜的性能(MIP)涂层传感器进行了研究和优化使用微分脉冲伏安法(第一项)。在最优条件下,传感器的响应表现出线性依赖ETP浓度(R2范围5.0×10 = 0.999)−7M - 1.0×10−5LOD (3 M
依托泊苷(ETP) (4-demethylepipodophyllotoxin亚乙基- b-D-glucoside)是一种有效的临床抗癌剂(
除非另有说明,所有化学物质用于这项工作在保证试剂级,且使用前未经纯化。依托泊苷粉、苄醇、柠檬酸、聚山梨酯80,聚乙二醇300被药物控制的国家实验室请提供(突尼斯)。吡咯(98%)、NaClO4(≥98%),硼酸(≥99.5%),醋酸(> 99%)来自Sigma-Aldrich (Steinheim,德国)。氢氧化钠(99%)和甲醇(99.8%)从Prolabo购买(法国)。Britton-Robinson缓冲区(马上回来)解决方案(0.05米),作为支持电解质,制备醋酸溶解适量,o-phosphoric,硼酸双重蒸馏水。品牌的ETP注入(依托泊苷Mylan®)是由国家实验室提供的药物控制(突尼斯)。股票的标准解决方案依托泊苷(1.0×10−3米)准备在甲醇和存储在冰箱在-18°C。标准的解决方案被稀释股票的解决方案准备马上回来解决方案(0.05米)和调整到所需的pH值为0.2 M氢氧化钠溶液。ETP是刚做好的工作标准试验前,通过添加适量的原液直接伏安细胞。
循环伏安法(CV)和微分脉冲伏安法(第一项)测量进行VoltaLab 80恒电位仪(模型PGZ 402)和数据收购使用Voltamaster 4软件完成。一个经典的电化学测量方法进行了三电极系统。玻碳电极(GCE)作为工作电极(A = 0.196厘米2),饱和甘汞电极(SCE)作为参比电极,铂丝为辅助电极。全球教育运动的表面是抛光使用氧化铝(0.05
吡咯的MIP electropolymerization获得的电影是表面的GCE使用循环伏安法(CV)之间的潜在范围-0.6和1.0 V (SCE)四个周期100 mVs的扫描速度−1。聚合混合物包括0.1 NaClO4,3.0×10−4M ETP, 0.1吡咯。electropolymerization之后,工作电极和双重蒸馏水冲洗和嵌入式ETP分子被氧化过度从导电聚合物基质中提取操作。GCE沉浸在0.1 M氢氧化钠溶液和氧化过度使用简历在0.8到1.2 V的潜在范围40 50 mVs周期的扫描速率−1直到所有ETP分子印迹聚吡咯的被矩阵。nonimprinted电极(夹)准备如上,但没有添加ETP聚合混合物以检查测量的可靠性。
适量的依托泊苷Mylan®注射方案,声称含有20.00毫克每5.0毫升,ETP被转移到一个100毫升容量瓶和溶解在甲醇。然后,混合在一个超声波浴用了5分钟。这个解决方案的一个整除转移到10.0毫升伏安细胞、稀释的体积为0.05 M马上回来的pH值4.0最终ETP在工作范围内的浓度。注射的内容的解决方案是使用标准添加法量化。
血清和血浆样本,获得无毒人血,请提供从医院的内部安全部队下拉(突尼斯)和储存冷冻直到试验。样本然后解冻轻轻在室温和漩涡,以确保同质性。一个整除的每个生物流体与ETP飙升,达到所需的浓度,然后用1.0毫升甲醇沉淀血浆蛋白治疗有效。然后,混合物在5000 rpm离心机15分钟,上层清液过滤是一个0.45毫米过滤器(微孔、德国)为了消除药物的蛋白结合的分数。随后,适当的上层清液转入伏安烧瓶和稀释到适当的浓度加入足量的支持电解质的pH值4.0。ETP的传感器开发的适宜性分析在人类尿液也被调查。为此,人类的尿液样本收集从一个健康志愿者立即在实验和在4000转离心10分钟。使用0.45上层清液的过滤
电流测量MIP / GCE传感器进行了使用微分脉冲伏安法(第一项)0.05马上回来的解决方案。voltammograms被记录在一个潜在的范围介于0.00和1 V (SCE)。使用以下仪器参数:第一项实验步骤潜在8 mV,调制幅度50 mV, 15 mVs扫描速率−1。在一个典型的运行,修改后的电化学传感器沉浸在伏安细胞包含10毫升的支持电解质的解决方案。测量后空白解决方案,适当的标准储备溶液体积的ETP添加一段激动人心的5分钟后,微分脉冲voltammograms记录调查传感性能。校准曲线是通过强化支持电解质与已知数量的ETP标准储备溶液和绘制当前强度与相应的ETP浓度。所有测量都是在环境温度(20±5°C)。
的electropolymerization单体发生在表面GCE沉浸在水溶液中含有吡咯0.1米,0.1米NaClO4和3.0×10−4ETP的M。循环voltammograms electropolymerization过程中记录之间使用一个潜在的自行车-0.6和1 V (SCE)。通过增加数量的周期,电流强度逐步增加确保进行MIP和夹电影逐步形成和涂布在gc上表面(图
循环voltammograms记录在印的形成和nonimprinted聚吡咯薄膜在玻璃碳电极。实验条件(吡咯):= 0.1米;(ETP) = 3.0×10−4M;[NaClO4)= 0.1;循环扫描的数量= 4;扫描速率= 100 mVs−1。
广泛的观察到峰值约40 mV MIP和夹修饰电极是归因于聚吡咯氧化。虽然voltammograms对应MIP和夹形成类似的形状,ETP的阳极峰对应氧化,出现在约0.6 V与MIP电影专门记录。此外,阳极和阴极电流强度的明显增加MIP电影相比,夹电影揭示了MIP和扼杀增长的差异。这种行为显然是归因于ETP分子和提供支持的存在表明其有效体现到聚合物基质。在这项研究中,电化学洗脱方法选择使用简历提取ETP从聚吡咯分子矩阵和创建互补印网站后续重新绑定。过氧化聚吡咯的被认为是一个有前途的替代方法,取代了传统提取尝试使用而准备MIPs [
主要操作参数包括pH值在第一项分析、孵化时间,单体、模板和支持电解质浓度和数量的周期是重要影响因素的识别能力MIP传感器(
为了达到最高的MIP / GCE传感器的灵敏度,重要的是讨论的pH值的影响Britton-Robinson ETP的缓冲溶液的电化学反应。MIP和夹修饰电极的反应评估包含5.0×10马上回来解决方案−6M ETP的pH值在2.0和12.0之间变化。如图
(一)Britton-Robinson缓冲溶液的pH值的影响;(b)吡咯浓度;(c) ETP浓度;和(d)的数量周期MIP、夹GCE敏感性。electroanalytical信号测量完成第一项应对5.0×10−6M ETP在马上回来解决方案(pH值4.0)。误差线代表三个独立测量的标准偏差。
探讨吡咯浓度的影响在修改传感器的响应,几个MIP gc /夹修改由不同吡咯浓度在0.025和0.4之间的聚合混合物m .其他操作参数保持不变。每个准备电极的分析性能评估通过记录其第一反应5.0×10的存在−6ETP的M。图
ETP在聚合混合物的浓度是另一个主要因素,在我们的调查研究。对于这个目标,MIP电影电化学合成了不同浓度的ETP 0.1×10之间−4和5.0×10−4在聚合混合物。如图
也报道,记录分析MIP修改传感器的响应依赖于重新绑定过程,因此培养时间的分析测量(
电化学传感器的识别能力可能会影响分子印迹聚吡咯膜的厚度。这个事实是MIP薄膜的厚度之间的比例和扫描数字应用在electropolymerization操作期间
夹和MIP电影之前和之后的由ATR-FTIR ETP分子光谱学为了控制的有效体现ETP分子进入overoxidized聚吡咯网络。变形振动与吡咯环碳氢键和碳氮债券被观察到在774厘米左右−1和1287厘米−1分别记录光谱(图
红外光谱光谱(a)夹电影,(b) MIP的影片,(c) overoxidized MIP的电影。
AFM开发模式成像是受雇于本研究进一步探讨发生在夹的表面的形态变化和MIP电影前后氧化过度的过程。图
敲击模式3 d AFM图像(12.5
图
DP voltammograms MIP / GCE传感器不同的ETP浓度:(1)5.0×10−7M;(2)6.0×10−7M;(3)7.0×10−7M;(4)8.0×10−7M;(5)1.0×10−6M;(6)2.0×10−6M;(7)3.0×10−6M;(8)4.0×10−6M;(9)6.0×10−6M;8.0×10 (10)−6M;(11)1.0×10−5实验条件:扫描速度:10 mVs−1;脉冲幅度:50 mV;和脉冲宽度:20毫秒。插图显示了校准曲线。误差线代表三个独立测量的标准偏差。
electroanalytical方法的鲁棒性是衡量的能力不受影响的摄动时轻微但故意变化方法参数并给出了证明其可靠性在正常使用。在目前的研究中,小的pH值变化的影响(4.0±0.1)和Britton-Robinson浓度(0.05±0.05)复苏和比例相对标准偏差(%相对标准偏差)评估5.0×10的决心−6M ETP。在每个实验中,只改变一个参数。如表所示
MIP的选择性膜被暴露评估修改GCE 5.0×10−6M ETP标准溶液浓度增加的添加剂(苄醇、柠檬酸、聚山梨酯80和聚乙二醇300)。这些物质通常是作为赋形剂的注射剂型,可能会干扰测定ETP通过传统方法。每个MIP的第一反应/ GCE传感器记录之前和之后的每一个干扰分子药物方案,信号变化的百分比计算。如表所示
辅料对微分脉冲伏安响应的影响在MIP / GCE传感器。
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苯甲醇 | 0.8 | 1.47 | 1.17 |
2 | 1.56 | 1.11 | |
5 | 1.61 | 1.44 | |
8 | 1.76 | 1.02 | |
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柠檬酸 | 0.8 | 1.13 | 0.88 |
2 | 1.39 | 1.24 | |
5 | 1.56 | 1.55 | |
8 | 1.73 | 1.45 | |
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聚山梨酯80 | 0.8 | 1.11 | 0.69 |
2 | 2.75 | 0.37 | |
5 | 3.16 | 1.67 | |
8 | 3.33 | 0.93 | |
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聚乙二醇300 | 0.8 | 1.14 | 1.66 |
2 | 1.98 | 0.75 | |
5 | 2.49 | 0.66 | |
8 | 2.66 | 1.31 |
MIP / GCE传感器的选择性也被测试在生物体液如血浆、血清和尿液的ETP代谢物ETP醌和ETP儿茶酚(图
代谢产物对微分脉冲伏安响应的影响在MIP / GCE传感器在生物人类体液。
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等离子体 | ETP醌 | 2 | 0.39 | 0.38 |
5 | 0.41 | 0.11 | ||
8 | 0.99 | 0.42 | ||
ETP苯邻二酚 | 2 | 0.92 | 0.60 | |
5 | 1.01 | 0.46 | ||
8 | 1.04 | 1.21 | ||
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血清 | ETP醌 | 2 | 0.88 | 0.55 |
5 | 0.96 | 1.21 | ||
8 | 0.99 | 0.29 | ||
ETP苯邻二酚 | 2 | 0.68 | 0.73 | |
5 | 1.74 | 0.43 | ||
8 | 1.90 | 0.28 | ||
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尿液 | ETP醌 | 2 | 0.44 | 0.61 |
5 | 0.58 | 1.42 | ||
8 | 0.61 | 0.78 | ||
ETP苯邻二酚 | 2 | 0.93 | 0.81 | |
5 | 1.23 | 1.09 | ||
8 | 1.31 | 0.91 |
为了演示MIP修改传感器的实际使用的药品样品分析,它被用来检测ETP在依托泊苷Mylan®注入。此外,测试该方法的可靠性,依托泊苷Mylan®也决定与前一个参考高效液相色谱法(
测定ETP在注射溶液(n = 6)使用提出了MIP / GCE传感器和报道的高效液相色谱法(
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意思是(5毫克/毫升) | 20.06 | 20.00 |
RSD % | 1.07 | 0.91 |
t(0.05显著性水平;n = 6) | 计算值0.415 < 2.571理论值 |
进一步探索发达传感器的实际应用,确定ETP在人类生物体液(血清、血浆和尿液样本)。结果在表中做了总结
人类液体复苏依托泊苷的生物。
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尿液 | 2 | 1.98 | 99.00 | 0.35 |
4 | 4.01 | 100.25 | 0.51 | |
等离子体 | 2 | 1.97 | 98.50 | 1.26 |
4 | 3.98 | 99.50 | 1.48 | |
血清 | 2 | 1.99 | 99.50 | 0.64 |
4 | 3.95 | 98.75 | 0.79 |
在这项研究中,制造一个新的electropolymerized分子印迹overoxidized聚吡咯直接ETP决心在注射剂型和生物液体了。我们所知,这是第一个报告工作的结合分子印迹技术和电化学检测ETP的量化。与之前报道的分析性能相比ETP传感器发表在科学文献(表
比较现在的工作和以前的电化学研究ETP的决心。
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CPE | 第一项 | 2.5×10−7- 2.5×10−5 | 1.0×10−7 | 血清 | ( |
MWCNT / GCE | AdsDPV | 2.0×10−8- 2.0×10−6 | 5.4×10−9 | 药品 | ( |
全球教育运动 | 第一项 | 0.06×10−6-10×10−6 | 0.017×10−6 | 癌症细胞 | ( |
全球教育运动/ cqd | 第一项 | 0.02×10−6-10×10−6 | 0.005×10−6 | 癌症细胞 | ( |
全球教育运动/ MIP | 第一项 | 5.0×10−7- 1.0×10−5 | 2.8×10−9 | 血清、血浆、尿液和药品 |
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使用的数据来支持本研究的发现可以从相应的作者。
作者声明没有金融、学术、商业、政治、或个人的利益冲突。